Primeiro relato do vírus da necrose infecciosa do baço e do rim (ISKNV) em dois ciclídeos nativos cultivados no Brasil
DOI:
https://doi.org/10.5433/1679-0359.2024v45n1p239Palavras-chave:
Aquicultura, Doenças em Peixes, Diagnóstico Molecular, Tucunaré, Acará, Iridovírus.Resumo
Tucunaré (Cichla ocellaris) e acará (Geophagus brasiliensis) são ciclídeos sul-americanos muito valorizados tanto na indústria de peixes ornamentais como esportivos. Desde 2017, vários surtos do vírus da necrose infecciosa do baço e do rim (ISKNV) foram relatados em produções brasileiras de peixes de espécies alimentares e ornamentais. Neste estudo, relata-se a detecção de ISKNV em tucunarés e acarás cultivados por PCR e análise de sequência parcial do gene principal proteína do capsídeo (major capsid protein - MCP). Tucunarés (n=10) e acarás (2) moribundos provenientes de uma piscicultura com elevada mortalidade entre juvenis e adultos dessas espécies, foram submetidos ao diagnóstico bacteriológicas e molecular. Os tecidos do baço, fígado, cérebro e rim foram semeados em ágar sangue de carneiro a 5% e ágar cistina coração com 1% de glicose e hemoglobina bovina. Nenhuma bactéria foi isolada dos 12 peixes. Além disso, o DNA extraído do fígado e baço de todos os animais foram testados para ISKNV usando dois ensaios convencionais de reação em cadeia da polimerase (cPCR) e dois ensaios de nested PCR (nPCR). O DNA de ISKNV foi amplificado em todos os 12 extraídos de DNA dos peixes testados, em dois ou mais ensaios de PCR. Os amplicons de ISKNV selecionados foram confirmados pelo sequenciamento Sanger. As sequências de nucleotídeos derivadas desses animais eram idênticas às cepas de ISKNV previamente detectadas em espécies alimentares (ex. tilápias e carpas) e espécies ornamentais, incluindo cepas previamente detectadas em peixes do Brasil. Acredita-se que este é o primeiro relato de ISKNV nesses ciclídeos nativos brasileiros.
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Referências
Azevedo, R. K. de, Abdallah, V. D., & Luque, J. L. (2006). Community ecology of metazoan parasites of the acará Geophagus brasiliensis (Quoy and Gaimard, 1824) (Perciformes: Cichlidae) from the Guandu river, State of Rio de Janeiro, Brazil. Acta Scientiarum Biological Sciences, 28(4), 403-411. DOI: https://doi.org/10.4025/actascibiolsci.v28i4.406
Azevedo, R. K. de, Abdallah, V. D., Silva, R. J. da, Azevedo, T. M. de, Martins, M. L., & Luque, J. L. (2012). Expanded description of Lamproglena monodi (Copepoda: Lernaeidae), parasitizing native and introduced fishes in Brazil. Brazilian Journal of Veterinary Parasitology, 21(3), 263-269. doi: 10.1590/S1984-29612012000300015 DOI: https://doi.org/10.1590/S1984-29612012000300015
Azevedo-Santos, V. M., Rigolin-SáI, O., & Pelicice, F. M. (2011). Growing, losing or introducing? Cage aquaculture as a vector for the introduction of non-native fish in Furnas Reservoir, Minas Gerais, Brazil. Neotropical Ichthyology, 9(4), e14638. doi: 10.1590/S1679-62252011000400024 DOI: https://doi.org/10.1590/S1679-62252011000400024
Békési, L., & Molnár, K. (1991). Calyptospora tucunarensis n. sp. (Apicomplexa: Sporozoea) from the liver of tucunare Cichla ocellaris in Brazil. Systematic Parasitology, 18, 127-132. doi: 10.1007/BF00017665 DOI: https://doi.org/10.1007/BF00017665
Casimiro, A. C. R., Garcia, D. A. Z., Vidotto-Magnoni, A. P., Britton, J. R., Agostinho, A. A., Almeida, F. S., & Orsi, M. L. (2018). Escapes of non-native fish from flooded aquaculture facilities: the case of Paranapanema River, southern Brazil. Zoologia, 35(e14638), 1-6. doi: 10.3897/zoologia.35.e14638 DOI: https://doi.org/10.3897/zoologia.35.e14638
Costa, A. R. da, Abreu, D. C. de, Torres Chideroli, R., Santo, K., Dib Gonçalves, D., Di Santis, G. W., & Pádua Pereira, U. (2021). Interspecies transmission of Edwardsiella ictaluri in Brazilian catfish (Pseudoplatystoma corruscans) from exotic invasive fish species. Diseases of Aquatic Organisms, 145, 197-208. doi: 10.3354/dao03610 DOI: https://doi.org/10.3354/dao03610
Dong, H. T., Nguyen, V. V., Le, H. D., Sangsuriya, P., Jitrakorn, S., Saksmerprome, V., Senapin, S., & Rodkhum, C. (2015). Naturally concurrent infections of bacterial and viral pathogens in disease outbreaks in cultured Nile tilapia (Oreochromis niloticus) farms. Aquaculture, 448(2015), 427-435. doi: 10.1016/j.aquaculture.2015.06.027 DOI: https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2015.06.027
Efron, B., Halloran, E., & Holmes, S. (1996). Bootstrap confidence levels for phylogenetic trees. Proceedings of the National Academy of Sciences, 93(23), 13429-13429. doi: 10.1073/pnas.93.23.13429 DOI: https://doi.org/10.1073/pnas.93.23.13429
Figueiredo, H. C. P., Tavares, G. C., Dorella, F. A., Rosa, J. C. C., Marcelino, S. A. C., Pierezan, F., & Pereira, F. L. (2022). First report of infectious spleen and kidney necrosis virus in Nile tilapia in Brazil. Transboundary and Emerging Diseases, 69(5), 3008-3015. doi: 10.1111/tbed.14217 DOI: https://doi.org/10.1111/tbed.14217
Fonseca, A. A., Jr., Laguardia-Nascimento, M., Scotá Ferreira, A. P., Pinto, C. A., Pereira Freitas, T. R., Rivetti, A. V., Jr., Ferreira Homem, V. S., & Camargos, M. F. (2022). Detection of megalocytivirus in Oreochromis niloticus and Pseudoplatystoma corruscans in Brazil. Diseases of Aquatic Organisms, 149, 25-32. doi: 10.3354/dao03657 DOI: https://doi.org/10.3354/dao03657
Instituto Brasileiro de Geografia e Estatística (2024). Pesquisas - Pecuária. https://cidades.ibge.gov.br/
International Committee on Taxonomy of Viruses (2022). Virus Taxonomy: 2022 Release. ICTV.
Januário, F. F., Gião, T., Azevedo, R. K., & Abdallah, V. D. (2019). Helminth parasites of Cichla ocellaris Bloch & Schneider, 1801 collected in the Jacaré-Pepira River, São Paulo state, Brazil. Anais da Academia Brasileira de Ciências, 91(2), e20180579. doi: 10.1590/0001-3765201920180579 DOI: https://doi.org/10.1590/0001-3765201920180579
Johan, C. A. C., & Zainathan, S. C. (2020). Megalocytiviruses in ornamental fish: a review. Veterinary World, 13(11), 2565-2577. doi: 10.14202/vetworld.2020.2565-2577 DOI: https://doi.org/10.14202/vetworld.2020.2565-2577
Kimura, M. (1980). A simple method for estimating evolutionary rate of base substitutions through comparative studies of nucleotide sequences. Journal of Molecular Evolution, 16(2), 111-120. doi: 10.1007/BF01731581 DOI: https://doi.org/10.1007/BF01731581
Kumar, S., Stecher, G., & Tamura, K. (2016). MEGA7: molecular evolutionary genetics analysis version 7.0 for bigger datasets. Molecular Biology and Evolution, 33(7), 1870-1874. doi: 10.1093/molbev/msw054 DOI: https://doi.org/10.1093/molbev/msw054
Kurita, J., & Nakajima, K. (2012). Megalocytiviruses. Viruses, 4(4), 521-538. doi: 10.3390/v4040521 DOI: https://doi.org/10.3390/v4040521
Kurita, J., Nakajima, K., Hirono, I., & Aoki, T. (1998). Polymerase chain reaction (PCR) amplification of DNA of red sea bream iridovirus (RSIV). Fish Pathology, 33(1), 17-23. doi: 10.3147/jsfp.33.17 DOI: https://doi.org/10.3147/jsfp.33.17
Lacerda, A. C. F., Roumbedakis, K., Bereta, J. G. S., Jr., Nuñer, A. P. O., Petrucio, M. M., & Martins, M. L. (2018). Fish parasites as indicators of organic pollution in southern Brazil. Journal of Helminthology, 92(3), 322-331. doi: 10.1017/S0022149X17000414 DOI: https://doi.org/10.1017/S0022149X17000414
Lucca Maganha, S. R. de, Cardoso, P. H. M., Carvalho Balian, S. de, Almeida-Queiroz, S. R. de, Fernandes, A. M., & Sousa, R. L. M. de. (2018). Molecular detection and phylogenetic analysis of megalocytivirus in Brazilian ornamental fish. Archives of Virology, 163(8), 2225-2231. doi: 10.1007/s00705-018-3834-6 DOI: https://doi.org/10.1007/s00705-018-3834-6
Madi, R. R., & Ueta, M. T. (2009). The role of Ancyrocephalinae (Monogenea: Dactylogyridae), parasite of Geophagus brasiliensis (Pisces: Cichlidae), as an environmental indicator. Brazilian Journal of Veterinary Parasitology, 18(2), 38-41. doi: 10.4322/rbpv.01802008 DOI: https://doi.org/10.4322/rbpv.01802008
Pattanayak, S., Paul, A., & Sahoo, P. K. (2020). Detection and genetic analysis of infectious spleen and kidney necrosis virus (ISKNV) in ornamental fish from non-clinical cases: First report from India. BioRxiv. doi: 10.1101/2020.08.12.247650 DOI: https://doi.org/10.1101/2020.08.12.247650
Pavanelli, G. C., Simas, I. P. N., Gonçalves, J. E., & Castro, A. L. B. P. (2018). Ginger oil (Zingiber officinale) in the fight against larvae of Contracaecum sp. that cause human zoonoses. O Mundo da Saúde, São Paulo, 42(2), 534-547. doi: 10.15343/0104-7809.20184202534547 DOI: https://doi.org/10.15343/0104-7809.20184202534547
Pozza, A., Lima, F. O. C. de, Haas, M., & Lehmann, P. A. (2018). Clinostomum sp. (Digenea: Clinostomidae) and Ascocotyle sp. (Digenea: Heterophyidae): metacercariae with zoonotic potential in fishes from Tramandaí River basin, southern Brazil. Boletim do Instituto de Pesca, 44(1), 105-109. doi: 10.20950/1678-2305.2018.303 DOI: https://doi.org/10.20950/1678-2305.2018.303
Rassier, G. L., Pesenti, T. C., Pereira, J., Jr., Silva, D. S. da, Wendt, E. W., Monteiro, C. de M., & Berne, M. E. (2015). Metazoan parasites of Geophagus brasiliensis (Perciformes: Cichlidae) in Patos Lagoon, extreme south of Brazil. Brazilian Journal of Veterinary Parasitology, 24(4), 447-453. doi: 10.1590/S1984-29612015075 DOI: https://doi.org/10.1590/S1984-29612015075
Rimmer, A. E., Becker, J. A., Tweedie, A., & Whittington, R. J. (2012). Development of a quantitative polymerase chain reaction (qPCR) assay for the detection of dwarf gourami iridovirus (DGIV) and other megalocytiviruses and comparison with the Office International des Epizooties (OIE) reference PCR protocol. Aquaculture, 358-359, 155-163. doi: 10.1016/j.aquaculture.2012.06.034 DOI: https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2012.06.034
Rocha, R. S., Pelegrini, L. S., Camargo, A. A., Abdallah, V. D., & Azevedo, R. K. de. (2015). Sphincterodiplostomum musculosum (Digenea, Diplostomidae) in Geophagus brasiliensis (Perciformes, Cichlidae) collected in a lake at Dois Córregos, São Paulo, Brazil. Ciência Rural, 45(12), 2223-2228. doi: 10.1590/0103-8478cr20141493 DOI: https://doi.org/10.1590/0103-8478cr20141493
Rodrigues, R. P., Pereira, J. A., Jr., Brabo, M. F., Santos, F. J. S., Aranha, T. V., & Santos, M. A. S. (2020). Marine sport fishing in the Municipality of São Caetano de Odivelas, Pará State, Amazon, Brazil. Research, Society and Development, 9(7), e835974701. doi: 10.33448/rsd-v9i7.4701 DOI: https://doi.org/10.33448/rsd-v9i7.4701
Scholz, T., Chambrier, A. de, Prouza, A., & Royero, R. A. (1996). Redescription of Proteocephalus macrophallus, a parasite of Cichla ocellaris (Pisces: Cichlidae) from South America. Folia Parasitologica, 43(4), 287-291.
Subramaniam, K., Gotesman, M., Smith, C. E., Steckler, N. K., Kelley, K. L., Groff, J. M., & Waltzek, T. B. (2016). Megalocytivirus infection in cultured Nile tilapia Oreochromis niloticus. Diseases of Aquatic Organisms, 119(3), 253-258. doi: 10.3354/dao02985 DOI: https://doi.org/10.3354/dao02985
Swaminathan, T. R., Johny, T. K., Nithianantham, S. R., Sudhagar, A., Pradhan, P. K., Sulumane Ramachandra, K. S., Nair, R. R., & Sood, N. (2022). A natural outbreak of infectious spleen and kidney necrosis virus threatens wild pearlspot, Etroplus suratensis in Peechi Dam in the Western Ghats biodiversity hotspot, India. Transboundary and Emerging Diseases, 69(5), e1595-e1605. doi: 10.1111/tbed.14494 DOI: https://doi.org/10.1111/tbed.14494
Valladão, G. M. R., Gallani, S. U., & Pilarski, F. (2018). South American fish for continental aquaculture. Reviews in Aquaculture, 10(2), 351-369. doi: 10.1111/raq.12164 DOI: https://doi.org/10.1111/raq.12164
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